M. Segal, Neurobiol. Learn. Mem, vol.138, p.3, 2017.

T. J. Lambert and J. C. Waters, J. Cell Biol, 2016.

D. Jin, P. Xi, B. Wang, L. Zhang, J. Enderlein et al., Nat. Methods, p.1, 2018.

H. Shen, L. J. Tauzin, R. Baiyasi, W. Wang, N. Moringo et al., Chem. Rev, vol.117, p.7331, 2017.

M. Dahan, S. Lévi, C. Luccardini, P. Rostaing, B. Riveau et al., Science, vol.302, p.442, 2003.

D. S. Lidke, P. Nagy, R. Heintzmann, D. J. Arndt-jovin, J. N. Post et al., Nat. Biotechnol, vol.22, 0198.

O. Kovtun, D. Sakrikar, I. D. Tomlinson, J. C. Chang, X. Arzeta-ferrer et al., ACS Chem. Neurosci, vol.6, p.526, 2015.

N. L. Andrews, K. A. Lidke, J. R. Pfeiffer, A. R. Burns, B. S. Wilson et al., Nat. Cell Biol, vol.10, p.955, 2008.

I. Izeddin, C. G. Specht, M. Lelek, X. Darzacq, A. Triller et al., PLoS One, 2011.

Y. Wang, E. Cai, T. Rosenkranz, P. Ge, K. W. Teng et al.,

P. Green, P. R. Gottlieb, and . Selvin, Bioconjug Chem, vol.25, p.2205, 2014.

A. R. Lowe, J. J. Siegel, P. Kalab, M. Siu, K. Weis et al., Nature, p.600, 2010.

R. Jungmann, M. S. Avendaño, M. Dai, J. B. Woehrstein, S. S. Agasti et al., Nat. Methods, vol.13, p.439, 2016.

S. Liu, Z. Zhang, E. Sun, J. Peng, M. Xie et al., Biomaterials, vol.32, p.7616, 2011.

D. Bhatia, S. Arumugam, M. Nasilowski, H. Joshi, C. Wunder et al., Nat. Nanotechnol, p.1112, 2016.

A. Sharonov and R. M. Hochstrasser, Proc. Natl. Acad. Sci, p.18911, 2006.

G. Giannone, E. Hosy, F. Levet, A. Constals, K. Schulze et al., Biophys. J, p.1303, 2010.

R. Jungmann, M. S. Avendano, J. B. Woehrstein, M. Dai, W. M. Shih et al., Nat Meth, vol.11, p.313, 2014.

A. Aloi, N. Vilanova, L. Albertazzi, and I. K. Voets, Nanoscale, vol.8, p.8712, 2016.

A. Auer, M. T. Strauss, T. Schlichthaerle, R. Jungmann, and N. Lett, , p.6428, 2017.

W. R. Legant, L. Shao, J. B. Grimm, T. A. Brown, D. E. Milkie et al., Nat. Methods, vol.13, p.359, 2016.

J. Lee, S. Park, W. Kang, and S. Hohng, Mol. Brain, vol.10, p.63, 2017.

N. S. Deußner-helfmann, A. Auer, M. T. Strauss, S. Malkusch, M. S. Dietz et al., Nano Lett, vol.18, p.4626, 2018.

X. Michalet, F. F. Pinaud, L. A. Bentolila, J. M. Tsay, S. Doose et al.,

S. Gambhir and . Weiss, Science, p.538, 2005.

T. Pons and H. Mattoussi, Ann. Biomed. Eng, vol.37, 1934.

H. Mattoussi, G. Palui, H. Bin, and . Na, Adv. Drug Deliv. Rev, vol.64, p.138, 2012.

K. D. Wegner and N. Hildebrandt, Chem. Soc. Rev, vol.44, p.4792, 2015.

D. Albrecht, C. M. Winterflood, M. Sadeghi, T. Tschager, F. Noé et al., J. Cell Biol, vol.215, p.37, 2016.

M. Tasso, E. Giovanelli, D. Zala, S. Bouccara, A. Fragola et al., ACS Nano, vol.9, p.11479, 2015.

L. Mikasova, L. Groc, D. Choquet, and O. J. Manzoni, Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A, p.18596, 2008.

W. W. Yu, X. Peng, and A. C. Int, , p.2368, 2002.

J. J. Li, Y. A. Wang, W. Guo, J. C. Keay, T. D. Mishima et al., J. Am. Chem. Soc, vol.125, p.12567, 2003.

P. E. Castillo, T. J. Younts, A. E. Chávez, and Y. Hashimotodani, Neuron, vol.76, p.70, 2012.

A. L. Gaffuri, D. Ladarre, and Z. Lenkei, Pharmacology, vol.90, p.19, 2012.

C. Leterrier, D. Bonnard, D. Carrel, J. Rossier, and Z. Lenkei, J. Biol. Chem, p.36013, 2004.

A. C. Simon, C. Loverdo, A. Gaffuri, M. Urbanski, D. Ladarre et al., Z. Lenkei, J. Mol. Cell Biol, issue.5, p.250, 2013.

C. Leterrier, J. Laine, M. Darmon, H. Boudin, J. Rossier et al., J Neurosci, vol.26, p.3141, 2006.

M. Tokunaga, N. Imamoto, and K. Sakata-sogawa, Nat. Methods, vol.5, p.159, 2008.

B. N. Giepmans, T. J. Deerinck, B. L. Smarr, Y. Z. Jones, and M. H. Ellisman, Nat. Methods, vol.2, p.743, 2005.

U. Schnell, F. Dijk, K. A. Sjollema, and B. N. Giepmans, Nat. Methods, vol.9, p.152, 2012.

R. P. Nieuwenhuizen, K. A. Lidke, M. Bates, D. L. Puig, D. Grünwald et al., Nat. Methods, vol.10, p.557, 2013.

S. Tom-dieck, L. Sanmartí-vila, K. Langnaese, K. Richter, S. Kindler et al.,

J. T. Kämpf, M. Fränzer, C. C. Stumm, E. D. Garner, and . Gundelfinger, J. Cell Biol, p.499, 1998.

E. D. Gundelfinger, C. Reissner, and C. C. Garner, Front. Synaptic Neurosci, 2016.

A. Burette, F. Collman, K. D. Micheva, S. J. Smith, and R. J. Weinberg, Front. Neuroanat, vol.9, p.100, 2015.

S. H. Lee, C. Jin, E. Cai, P. Ge, Y. Ishitsuka et al.,

C. M. Demonte, S. Dundas, J. Y. Park, W. N. Delgado, P. R. Green et al., , p.6, 2017.

S. Bolte and F. P. Cordelières, J. Microsc, vol.224, p.213, 2006.

B. Lai, X. Qiu, K. Zhang, R. Zhang, H. Jin et al., two cases considered in this work: QDs-anti-FLAG used to target the extracellular FLAG tag corresponding to the over-expressed CB1 transmembrane receptor with intracellular GFP fluorescent terminus (left) and QDs-anti-CB1 employed to target the endogenous CB1 receptor (right), both in live cell experiments. (c) Wide-field epifluorescence images of the FLAG-CB1-GFP and QD channels

, Note that biofunctional QDs allow visualization of the majority of neurites with only 2 minutes of acquisition. (d) Two neurites from panel c (labeled 1, 2) were selected for the kymographs on the GFP (green) and QD (magenta) channels. The Brownian diffusion of QDs is clearly visible in the kymographs

, hippocampal neurons exposed to high laser power excitation. Four non-consecutive time lapses of 32 s each are presented (right) together with a merged image